Клеточный состав крови здорового человека достаточно постоянен, поэтому его изменения указывают на те или иные патологические процессы в организме.
Однако даже у здорового человека могут наблюдаться некоторые колебания состава крови в течение суток под влиянием пищи, физической нагрузки, количества принятой жидкости и т. д. Для устранения влияния этих факторов кровь для исследования следует брать при одинаковых условиях в одно и то же время (утром, натощак) из пальца (возьмет лаборант).
Биохимическое исследование крови заключается в определении содержания в крови некоторых веществ (глюкозы крови, билирубина, холестерина, белка, креатина и др.). Их содержание изменяется при тех или иных заболеваниях (увеличивается или уменьшается), что позволяет использовать эти данные для постановки диагноза, а также контроля за проводимым лечением.
Кровь для биохимического и иммунологического исследования берет медицинская сестра в процедурном кабинете из локтевой вены утром натощак, в чистую сухую центрифужную пробирку, 5–7 мл. Оформляется направление в клиническую лабораторию.
68. Забор крови на общий анализ
Необходимые условия: исключить влияние отрицательных факторов на кровь пациента перед исследованием, получить направление от врача для исследования крови на общий анализ. Венозная кровь берется из локтевой вены посредством пункции и смешивается в пробирке с противосвертывающим средством (цитратом, гепарином или др.).
Выполнение процедуры:
1) рассказать об отрицательных факторах, способных изменить состав крови.
Отрицательными факторами, способными изменить состав крови, являются физическая и умственная нагрузка; применение лекарственных средств, особенно парентеральное введение (с помощью инъекций); воздействие рентгеновских лучей, физиотерапевтических процедур. Повторные исследования необходимо проводить в одни и те же часы, так как морфологический состав крови колеблется на протяжении суток;
2) обеспечить направлением;
3) провести инструктаж, уточнить его понимание: объяснить пациенту, что кровь из пальца возьмут утром, натощак;
4) пациенту явиться в лабораторию с направлением.
Взятие крови из вены на ИФА.
Выполнение процедуры:
1) вымыть и осушить руки;
2) надеть спецодежду;
3) подготовить оснащение;
4) помочь пациенту занять удобное положение лежа или сидя для венепункции;
5) вскрыть одноразовый шприц, собрать его, выпустить воздух из шприца;
6) выполнить венепункцию;
7) взять из вены 5-10 мл крови, извлечь иглу, прижать место пункции стерильным тампоном на 3–5 мин;
8) поместить кровь в стерильный пенициллиновый флакон, закрыть флакон стерильной резиновой пробкой и пронумеровать его;
9) обработать пробку флакона расплавленным (на водяной бане) парафином с помощью кисточки;
10) установить флакон в металлический контейнер в ячейку;
11) закрыть контейнер, герметизировать его липкой лентой;
12) сбросить тампон в дезраствор, убедиться, что кровь не выделяется из места пункции вены;
13) помочь пациенту встать или лечь удобно;
14) установить контейнер в бикс, уплотнить ватой или поролоном, сверху положить целлофановый пакет с направлениями, закрыть бикс;
15) снять спецодежду;
16) вымыть и осушить руки.
Примечание: доставить бикс с кровью транспортом лечебного заведения в иммунологическую лабораторию.
69. Взятие крови из вены на гемокультуру (стерильность) и чувствительность к антибиотикам
Цель: определить вид возбудителя инфекционного заболевания и его чувствительность к антибиотикам. Уточнить причины неясных лихорадок.
1. Выполнить венепункцию.
2. Взять из вены 3–5 мл крови, извлечь иглу, прижать место пункции стерильным тампоном на 3–5 мин.
Примечание: набирается из вены в первую неделю заболевания 10 мл в 100 мл флакон; во вторую неделю – 15 мл в 150 мл флакон; в третью неделю – 20 мл во флакон 200 мл.
2. Открыть стерильную емкость левой рукой, соблюдая стерильность, обжечь горлышко над пламенем спиртовки.
3. Выпустить медленно кровь из шприца, не касаясь стенок емкости. Закрыть емкость, обжигая пробку, пронумеровать ее.
4. Обработать пробку флакона расплавленным (на водяной бане) парафином с помощью кисточки.
5. Установить флакон в металлический контейнер в ячейку.
6. Закрыть контейнер, герметизировать его липкой лентой.
7. Сбросить тампон в дезраствор, убедиться, что кровь не выделяется из места пункции вены.
8. Помочь пациенту встать или лечь удобно.
9. Установить контейнер в бикс, уплотнить ватой или поролоном, сверху положить целлофановый пакет с направлениями, закрыть бикс.
10. Снять спецодежду.
11. Вымыть и осушить руки.
Примечание: доставить бикс с кровью транспортом лечебного заведения в иммунологическую лабораторию в течение 1 ч.
70. Исследование мокроты
Лабораторные методы исследования мокроты позволяют судить о характере патологического процесса. При наличии мокроты необходимо определить ее суточное количество, которое может колебаться от 10–15 мл (при хроническом бронхите) до 1 л и более (при бронхоэктатической болезни).
При наличии у пациента мокроты возникает необходимость в ее повторных исследованиях – микроскопических, бактериологических и т. д.
Наиболее достоверные результаты получаются в тех случаях, когда мокроту получают при бронхоскопии. При этом в нее не попадают слюна, микроорганизмы полости рта.
Мокрота – продукт болезненных процессов в дыхательных путях и легких, удаляемый при кашле.
Выделение мокроты свидетельствует о заболевании.
Количество мокроты составляет от нескольких плевков при остром бронхите или в начале воспаления легких до 1–2 л при нагноительных заболеваниях легких.
Запах для обычной мокроты нехарактерен. При тяжелых формах воспаления он может быть гнилостным, зловонным.
Консистенция и цвет зависят от состава мокроты.
Слизистая мокрота бесцветная, прозрачная, вязкая, наблюдается в начале бронхита, воспаления легких, при бронхиальной астме.
Гнойная мокрота сливкообразная, зеленоватая, появляется при прорыве гнойника легкого в бронх.
Кровянистая мокрота имеет различный вид в зависимости от количества и качества попавшей в нее крови. Кровь в мокроте в виде прожилок или сгустков бывает при туберкулезе, опухолях легкого, расширениях бронхов.
Ржавая мокрота образуется при крупозном воспалении легких.
Малиновая мокрота образуется при распадающихся опухолях легкого.
Коричневая гнойная мокрота образуется при нагноении легкого и распаде гнойника.
Техника сбора мокроты:
1) собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании;
2) необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты;
3) необходимо вечером почистить зубы, а утром, натощак прополоскать рот и глотку кипяченой водой непосредственно перед сбором.
1. Открыть крышку банки.
2. Откашлять и собрать мокроту в стерильную банку (не менее 5 мл).
3. Закрыть крышку.
Так, при сборе мокроты для исследования на микобактерии туберкулеза необходимо иметь в виду, что они обнаруживаются только в том случае, если их содержание в 1 мл мокроты составляет не менее 10 000. Поэтому при сборе мокроты ее накапливают в течение 1–3 суток и доставляют в клиническую лабораторию в количестве не менее 15–20 мл.
Примечание: бактериоскопия проводится троекратно.
71. Забор материала из зева для бактериологического исследования
1. Вымыть руки, надеть маску, перчатки.
2. Поставить номер на пробирках, соответствующий номеру в направлении. Установить пробирку в штатив.
3. Пациент открывает рот. Фиксировать шпателем корень языка.
4. Извлечь из пробирки стержень со стерильным тампоном.
5. Взять мазок, не касаясь тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, последовательно обтерев правую миндалину, затем небную дужку, язычок, левую небную дужку, левую миндалину и заднюю стенку глотки.
Провести одним тампоном справа и слева (при подозрении на дифтерию – на границе измененной и неизмененной поверхности миндалин). При неясно локализованных изменениях взять мазки двумя тампонами: из очага и из всех других секторов ротоглотки, указав это на пробирке.
6. Вынуть шпатель из полости рта, погрузить в дезраствор.
Шпатель после дезинфекции подлежит предстерилизационной обработке и стерилизации.
7. Извлечь тампон, не касаясь им слизистой оболочки полости рта и языка.
8. Ввести тампон в пробирку, не касаясь наружной поверхности пробирки, плотно закрыть ее.
9. Поставить пробирку в штатив, затем в бикс, закрыв его на "замок".
10. Снять перчатки, маску, погрузить их в дезинфицирующий раствор.
11. Оформить направление в бактериологическую лабораторию.
12. Доставить пробирку с сопроводительным документом в лабораторию.
Забор материала из носоглотки
1. Производить утром, натощак, до лечения.
2. Вымыть руки, надеть халат, маску и перчатки.
3. Поставить номер на пробирке, соответствующий номеру направления.
4. Установить пробирку в штатив.
5. Налить в пробирку 3–5 мл питательной среды.
6. Изогнуть стерильный ватный тампон о край пробирки под углом 135° на расстоянии 3–4 см от конца.
7. Пациент широко открывает рот.
8. Надавить шпателем на корень языка.
9. Ввести тампон концом вверх под мягкое небо в носоглотку и собрать слизь. Провести тампоном под мягким небом 2–3 раза.
10. Извлечь тампон, не касаясь слизистой оболочки рта и зубов.
11. Поместить в пробирку с питательной средой, не касаясь ее стенок.
12. Поставить пробирку в штатив, штатив в бикс.
Проверить соответствие номера пробирки с номером направления и Ф. И. О. пациента.
13. Положить грелку в бикс, термометр для поддержания температуры в пределах 38 °C в момент транспортировки. Закрыть бикс на "замок".
14. Снять перчатки, маску и погрузить их в дезинфицирующий раствор.
15. Доставить материал в бактериологическую лабораторию в течение 1 ч.
72. Исследование мочи
Сбор мочи для общего клинического анализа
1. Обучить пациента правильно подготовить сосуд для сбора мочи:
1) взять сухую чистую стеклянную банку с крышкой емкостью 200 мл;
2) обучить пациента технике гигиенической процедуры (подмывания) утром, накануне исследования;
3) приготовить теплую кипяченую воду с мылом в емкости;
4) подмыть наружные половые органы и промежность, поливая воду в следующей последовательности: область лобка, наружные половые органы, промежность, область заднего прохода в направлении от уретры к заднему проходу; вытереть кожу насухо в той же последовательности и направлении (если у пациентки в этот момент менструация, посоветуйте ей закрыть область влагалища ватно-марлевым тампоном).
2. Оформить направление на общий анализ мочи в клиническую лабораторию по форме.
3. Обучить пациента технике сбора мочи на клинический анализ:
1) утром, после подмывания выделить первую струю мочи в унитаз на счет "1", "2";
2) задержать мочеиспускание;
3) открыть банку;
4) собрать в банку 150–200 мл мочи (при необходимости завершить мочеиспускание в унитаз); д) закрыть банку крышкой.
4. Объяснить пациенту, где он должен оставить емкость с мочой и направление, а также кому он должен сообщить об этом.
Сбор мочи на сахар из суточного количества.
1. Объяснить пациенту, что он должен соблюдать обычный водно-пищевой и двигательный режим и собирать мочу в течение суток.
2. Обучить пациента правилам подготовки посуды для сбора мочи и емкости для доставки в лабораторию: подготовить чистую стеклянную банку емкостью 2–5 л и банку емкостью 200 мл для доставки мочи в лабораторию.
3. Обучить пациента технике сбора мочи для исследования:
1) в 6.00 ч предложить пациенту выпустить мочу в унитаз;
2) собрать всю выделяемую мочу в большую банку в течение суток (до 6.00 ч следующего дня).
3) измерить общее количество мочи (суточный диурез), записать результат в направлении;
4) перемешать (взболтать) суточное количество мочи в банке;
5) отлить 100–200 мл мочи в отдельно приготовленную баночку для доставки в лабораторию.
4. Прикрепить направление-этикетку с указанием суточного диуреза (суточного количества мочи) на баночку емкостью 200–300 мл.
В условиях стационара : объяснить пациенту, куда он должен собирать мочу в течение суток и кому сообщить об окончании сбора мочи.
73. Сбор мочи по методу Зимницкого
1. Объяснить пациенту, что он должен соблюдать: обычный водно-солевой и двигательный режим, не принимать диуретики (мочегонные средства).
2. Обучить пациента правилам подготовки посуды для сбора мочи: подготовить 8-10 чистых стеклянных банок емкостью 200–500 мл с этикетками, оформленными по форме, с указанием времени сбора мочи: 6.00-9.00, 9.00–12.00, 12.00–15.00, 15.00–18.00, 18.00–21.00, 21.00–24.00, 24.00–03.00, 03.00-6.00 часов следующего дня. Дополнительные банки оформить после сбора мочи.
3. Объяснить пациенту, что сбор мочи будет проходить в течение суток:
1) в 6.00 ч предложить пациенту выпустить мочу в унитаз;
2) собирать каждые 3 ч в отдельную банку;
3) объяснить, что при отсутствии мочи за временной промежуток соответствующая банка остается пустой, на этикетке отмечается "отсутствие порции мочи" и доставляется вместе с остальными в лабораторию;
4) предупредить пациента, что ночью его разбудят для сбора соответствующей порции мочи (родственники или медсестра).
4. Объяснить и показать, куда ставить банки с мочой.
5. Учитывать всю жидкость, принятую за сутки (вести лист учета водного баланса).
6. В условиях стационара: доставить все порции в лабораторию.
Сбор мочи по методу Нечипоренко.
1. Обучить пациента правилам подготовки посуды для сбора мочи: подготовить сухую чистую стеклянную посуду.
2. Оформить направление на исследование.
3. Обучить пациента технике сбора мочи на исследование:
1) после подмывания: – выделить первую струю мочи в унитаз (или судно) на счет "1", "2";
2) задержать мочеиспускание;
3) выделить мочу в баночку в количестве не менее 10 мл;
4) задержать мочеиспускание, отставить баночку;
5) завершить мочеиспускание в унитаз. Для исследования собрать 2–3 мл мочи.
4. Закрыть баночку крышкой.
В стационарных условиях: объяснить, где поставить банку с мочой и направлением.
74. Сбор мочи для бактериологического исследования
Техника сбора мочи на исследование:
1) после подмывания взять баночку, открыть крышку так, чтобы не касаться внутренней поверхности крышки и баночки;
2) положить крышку внутренней поверхностью вверх на бумажное полотенце;
3) выделить первую струю мочи в унитаз на счет"1", "2";
4) задержать мочеиспускание;
5) подставить баночку;
6) выделить мочу в баночку в количестве не менее 10 мл и задержать мочеиспускание.
7) закрыть баночку крышкой, не касаясь внутренней поверхности крышки и баночки;
8) завершить мочеиспускание в унитаз;
9) вымыть руки, осушить.
Больному необходимо объяснить, где поставить баночку с мочой и направлением. Баночку с мочой можно хранить в специальном холодильнике при температуре +4 °C не более 24 ч.
Сбор мочи на диастазу.
Собирают в чистую сухую посуду 50 мл свежевыделенной мочи и доставляют в лабораторию в теплом виде. Исследуется сразу при поступлении.
Сбор мочи на глюкозурический профиль
1. Медсестра объясняет пациенту, что он должен соблюдать: обычный водно-пищевой и двигательный режим, не принимать мочегонные средства.
2. Подготовить 3 чистые стеклянные банки с крышками емкостью 500 или более мл с указанием времени сбора мочи: 8.00–14.00, 14.00–22.00, 22.00-8.00 ч следующего дня; подготовить 3 чистые, стеклянные банки с крышками емкостью 200 мл для транспортировки мочи в лабораторию.
3. В 8.00 опорожнить мочевой пузырь.
4. Опорожнять мочевой пузырь с 8 до 14.00 в первую емкость, с 14.00 до 22.00 – во вторую, с 22.00 до 8.00 следующего дня – в третью емкость.
5. Определить количество мочи в каждой емкости и записать результат на бланке направления.
6. Перемешать последовательно мочу в больших емкостях, отлить в емкости по 200 мл.
В условиях стационара доставить в лабораторию емкости, плотно закрытые крышками с этикетками-направлениями.
Сбор мочи на исследование желчных пигментов
1. Налить в пробирку 4–5 мл мочи.
2. Набрать пипеткой примерно 1 мл раствора Люголя или 1 %-ный спиртовой раствор йода.
3. Осторожно, по стенке, наслоить раствор Люголя или 1 %-ный спиртовой раствор йода на мочу в пробирке. Пробирку держать наклонно.
4. Отметить появление на границе жидкостей зеленого кольца по мере наслоения. Появление на границе жидкостей зеленого кольца возможно при наличии билирубина в моче.
5. Слить мочу, продезинфицировать.
6. Погрузить в емкость для последующей дезинфекции все использованные предметы.
75. Исследование кала
Сбор кала на копрограмму
1. Отменить лекарственные средства, изменяющие внешний вид фекалий и усиливающие перистальтику: слабительные; ваго– и симпатотропные средства: эфедрин, прозерин; бария сульфат, препараты висмута, железа и препараты, вводимые в ректальных свечах, приготовленных на жировой основе.
2. За три дня до исследования необходимо избегать пищевых продуктов, содержащих железо: мясо, рыбу, все виды зеленых овощей.
3. Собрать 5-10 г кала в чистую, сухую, стеклянную посуду, используя шпатель, который затем надо уничтожить (сжечь).
4. Емкость с пробой кала плотно закрыть крышкой.
Исключить попадание мочи. Нельзя брать кал после клизмы. При необходимости собирают всю порцию кала за одну дефекацию во взвешенную посуду.
5. Доставить пробу кала с направлением в клиническую лабораторию.
Сбор кала на простейшие и яйца глистов
1. Подготовки не требуется. Кал собирают в чистую, сухую посуду без примеси воды, мочи и дезинфицирующих веществ из разных мест разовой порции в количестве около 1 емкости 200– граммовой баночки (3–5 г).
2. Емкость с пробой кала плотно закрыть крышкой.
Для контроля лечения в лабораторию направляют всю порцию испражнений в дни приема противоглистного средства, вместе с крупным паразитом, если таковой выделился. Остатки кала дезинфицируют погружением в 10 %-ный раствор лизола в течение 6 ч.